大动脉转位致---型---病动物模型
造模方法 体重为1.5~2.0kg雄性新西兰兔,按30mg/kg体重的剂量经耳缘静脉注射硫喷妥钠麻l醉,然后每隔30min静脉注射3~5mg/kg体重的剂量维持麻l醉。动物行仰卧位固定,前---皮肤常规去毛后消毒,作前正中无菌手术切口,切开皮肤、皮下组织及肌层,于第6、第7肋间水平横断胸骨,延正中线向上剪开胸骨,撑开器撑开,剪开心包,暴露---,注意保持纵隔胸膜的完整。游离肺动脉后,用4号丝线双活结结扎左心耳根部以阻断血流,于左心耳内注入1%---,用侧壁钳钳夹肺动脉左侧壁,南京实验外包,在与左心耳对应部位剪开4~5mm的切口,用8/0的无损伤尼龙缝合线将肺动脉与左心耳侧侧吻合,先连续外翻缝合后壁,再间断外翻缝合前壁。缝线打结前排尽空气,先松开左心耳根部的结扎线,再缓慢松开肺动脉上的侧壁钳。生理盐水冲洗胸腔,置入硅胶---片,关胸。术后每日肌肉注射青l霉l素40万u以预防感l染,共5d,术后3d拔取---条。手术当中观察左心耳的颜色变化。于术后第4周,麻l醉,经腹l股l沟处切口l,l暴露股动脉,抽血测定ph值、氧分压(po2)、---分压(pco2)、氧饱和度(sao2)、---白含量(hb)、红细胞比容(hct)。采血后处死动物,观察---及吻合情况。术中吻合完成时可见左心耳颜色明显变暗,术后4周处死动物可见双心室轻度扩大,以右心室明显,吻合口通畅,直径为3~4mm,吻合口处光滑。术后1周动物的po2、sao2明显降低。术后第4周,po2和sao2的降低程度有所减小,考虑是代偿的原因。注意吻合口的大小要严格控制在4~5mm,太大时,---的低氧会造成动物早期死l亡;太小时,有不能满足实验的要求,且容易形成血l栓而堵塞吻合口。
实验动物的编号
编号
实验动物常需要标记以示区别。编号的方法很多,根据动物的种类数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法。
(一)挂牌法:将号码烙压在圆形或方形金属牌上(铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈),或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带上,将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大型动物。
(二)打号法:用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵,用耳号钳刺上号码,然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。该法适用于耳朵比较大的兔、狗等动物。
(三)法:用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水,在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下,在受刺部位留有一黑色标记。该法适用于大小鼠、---等。在实验动物数量少的情况下,也可用于兔、狗等动物。
(四)化学---涂染动物被毛法:经常应用的涂染化学---有
涂染红色:0.5%中性红或品红溶液。
涂染黄色:3-5%溶液。
涂染黑色:煤焦油的酒精溶液。
根据实验分组编号的需要,可用一种化学---涂染实验动物动物背部被毛就可以。如果实验动物数量较多,则可以选择两种染料。该方法对于实验周期短的实验动物较合适,时间长了染料易退掉;对于哺乳期的子畜也不适合,整体实验外包,因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法:该法适用于大、中型动物,如狗、兔等。方法是用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码,此法编号清楚---,但只适于短期观察。
(六)打孔或剪缺口法:可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一定的号码。如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻一下,实验外包价格,以免愈合后看不出来。该法可以编至1~ 9999号,此种方法常在饲养大量动物时作为号采用。
动物模型的设计原则
适用性和可控性
供医学实验研究用的动物模型,在时,应尽量考虑到今后---应用和便于控制其---的发展,以利于研究的开展。如雌能终止大鼠和小鼠的早期,但不能终止人的。因此,选用雌大鼠和小鼠终止早期的模型是不适用的,因为在大鼠和小鼠筛选带有雌活性的时,常常会发现这些能终止,似乎可能是有效的---药,但一旦用于人则并不成功。所以,如果知道一个化合物具有雌活,用这个化合物在大鼠或小鼠观察终止的作用是没有意义的。又如选用大小鼠作作实验性腹膜炎就不适用,因为它们对革兰氏阴性---具有较高的抵抗力,很不容易造成腹膜炎。有的动物对某致病因子---敏感,极易,也不适用。如狗腹腔注射粪便滤液引起腹膜炎很快( 80%24 小时内),生物实验外包,来不及做实验观察,而且粪便剂量及---菌株不好控制,因此不能准确重复实验结果。
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