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    2020-9-14

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大动脉转位致---型---病动物模型

造模方法  体重为1.5~2.0kg雄性新西兰兔,按30mg/kg体重的剂量经耳缘静脉注射硫喷妥钠麻l醉,然后每隔30min静脉注射3~5mg/kg体重的剂量维持麻l醉。动物行仰卧位固定,前---皮肤常规去毛后消毒,实验动物外包,作前正中无菌手术切口,切开皮肤、皮下组织及肌层,于第6、第7肋间水平横断胸骨,延正中线向上剪开胸骨,动物实验外包 价格,撑开器撑开,剪开心包,暴露---,注意保持纵隔胸膜的完整。游离肺动脉后,用4号丝线双活结结扎左心耳根部以阻断血流,动物实验外包,于左心耳内注入1%---,南京动物实验外包,用侧壁钳钳夹肺动脉左侧壁,在与左心耳对应部位剪开4~5mm的切口,用8/0的无损伤尼龙缝合线将肺动脉与左心耳侧侧吻合,先连续外翻缝合后壁,再间断外翻缝合前壁。缝线打结前排尽空气,先松开左心耳根部的结扎线,再缓慢松开肺动脉上的侧壁钳。生理盐水冲洗胸腔,置入硅胶---片,关胸。术后每日肌肉注射青l霉l素40万u以预防感l染,共5d,术后3d拔取---条。手术当中观察左心耳的颜色变化。于术后第4周,麻l醉,经腹l股l沟处切口l,l暴露股动脉,抽血测定ph值、氧分压(po2)、---分压(pco2)、氧饱和度(sao2)、---白含量(hb)、红细胞比容(hct)。采血后处死动物,观察---及吻合情况。术中吻合完成时可见左心耳颜色明显变暗,术后4周处死动物可见双心室轻度扩大,以右心室明显,吻合口通畅,直径为3~4mm,吻合口处光滑。术后1周动物的po2、sao2明显降低。术后第4周,po2和sao2的降低程度有所减小,考虑是代偿的原因。注意吻合口的大小要严格控制在4~5mm,太大时,---的低氧会造成动物早期死l亡;太小时,有不能满足实验的要求,且容易形成血l栓而堵塞吻合口。









小鼠膀胱ai原位瘤动物模型建立方法


膀胱灌注法通常采用对数生长期的mb49小鼠膀胱ai细胞株作为实验材料,6-12周龄的雌性c57/bl6小鼠作为实验动物。- -般膀胱内灌注数量为:10^4-5*10^5个,10^4-10^5个, .5x10^6-4x10^6个。实验中常通过导管对经过膜处理后膀胱灌入细胞悬液--定时间后使细胞粘附于膀胱壁上,建立起小鼠原位膀胱ai模型。该方法简便有效,成瘤率相对较高。但是在膀胱粘膜完整的情况下,发癌率- -般只有10%。为提高其移植成功率,研究者通常采用膀胱粘膜损伤技术进行膀胱灌注。常用的膀胱损伤技术有电灼法,酸性溶液和胰蛋白酶灌注法(17-19)。该方法成瘤率高,具有很强的实用性,但是膀胱ai模型插管要求高,肿liu细胞容易外渗,并且膜损伤处理过后易发生膀胱内发炎现象。



正确地评估动物---模型

应该懂得没有一种动物模型能完全人类---真实情况,动物毕竟---体的缩影。模型实验只是一种间接性研究,只可能在一个局部或几个方面与人类---相似。因此,模型实验结论的正确性只是相对的,终必须在人体身上得到验证。过程中一旦出现与人类---不同的情况,必须分析其分岐范围和程度,找到相平行的共同点,正确评估哪些是有价值的。





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