细胞实验介绍——流式细胞术检测细胞周期和凋亡
流式细胞术检测细胞周期：
细胞周期：指细胞从---次分裂结束起到下一次分裂结束为止的活动过程，通常由g0/g1期、s期、g2期和m期组成。g0/g1期：有丝分裂发生，细胞毒性实验，细胞分裂成两个细胞，进入下一个细胞周期，或者进入静止期（g0期），而g0期从dna含量上无法与g1期区分，细胞开始rna和蛋白质的合成，但dna含量仍保持二倍体。s期：dna开始合成，细胞核内dna的含量介于g1期和g2期之间。g2期和m期：当dna成为4倍体时，细胞进入g2期。g2期细胞继续合成rna及蛋白质，直到进入m期。
pi法是---的周期检测方法。pi为插入性---荧光染料，能选择性的嵌入---dna和rna双链螺旋的碱基之间与之结合，其结合的量与dna的含量成正比例关系，用流式细胞仪进行分析，就可以得到细胞周期各个阶段的dna分布状态，细胞融合实验报告，从而计算出各个期的百分含量。
一般流程：细胞收集-70%酒精固定过夜-pi染色-流式细胞仪检测。
细胞凋亡：细胞凋亡的早期就有细胞膜表面破损发生。破损时凋亡细胞表面的磷脂腺丝氨酸(ps)可以从细胞内膜翻转至细胞的外膜。该过程发生在之前，检测ps的表达，能反映早期凋亡。annexinv是ca2+依赖的磷脂结合蛋白，对ps有---的亲和性，并且可以与暴露于细胞外的ps相结合。利用这一原理，可以将annexinv标记荧光来识别早期的细胞凋亡。通常利用annexinv-fitc和碘化丙啶(pi)来区分凋亡和坏---。pi的膜通透性很差，因而只能标记坏死的细胞。
一般流程：细胞收集-pi-annexinv标记-流式细胞仪检测。
结果示例：
图 a 细胞周期检测图；b 细胞凋亡检测图
平板克l隆形成实验基本步骤::
1、取对数生长期的各组细胞，分别用0.25%胰 蛋白酶---并吹打成单个细胞，并把细胞悬浮在10%胎牛的dmem培养液中备用。
2、将细胞悬液作梯度倍数稀释，每组细胞分别以每皿50、100、200 个细胞的梯度密度分别接种含10ml 37预温培养液的皿中，并轻轻转动，使细胞分散均匀。置37团5% co2及饱和湿度的细胞培养箱中培养2~3周。
3、经常观察，当培养皿中出现肉眼可见的时，终止培养。弃去上清液，用pbs小心浸洗2次。加4%---固定细胞5ml固定15分钟。然后去固定液，加适量gimsa应用染色液染10~30分钟，然后用流水缓慢洗去染色液，空气干燥。
4、将平皿倒置并叠加一张带网格的透明胶片，用肉眼直接计数，或在显微镜(低倍镜)计数大于10个细胞的数。后计算形成率。形成率= (数/接种细胞数) x100%平板形成试验方法简单，适用于贴壁生长的细胞。适宜底物为玻璃的、塑料瓶皿。试验成功的关键是细胞悬液的制备和接种密度。细胞一定要分散得好，不能有细胞团，接种密度不能过大。平板形成试验方法简单，适用于贴壁生长的细胞。适宜底物为玻璃的、塑料瓶皿。试验成功的关键是细胞悬液的制备和接种密度。细胞- -定要分散得好，不能有细胞团，细胞实验外包，接种密度不能过大。
透射电镜自噬小体检测
胰酶---，收集作用后的细胞，离心，先将细胞块固定在2.5%成二醛和0.1%的pbs溶液中保存在4c中过夜。
再用---梯度脱水，榆林细胞，接下来用环氧树脂浸透并切成薄片。随后超薄切片用铜网固定，后用重金属---双氧---和柠檬酸铅染色。通过tem分析凋亡细胞内超微结构变化，拍照保存。
贴壁细胞:先倒出培养液，采用胰蛋白酶---或者用细胞刮(会产生碎屑)刮下:带培养液进行离心，100-1500/mim 5 10min。离心完毕倒出培养液。管底的细胞团不要打散， 沿管壁倒入适量(一般为材料体积的5-10倍)的2.5-3.5%成醒固定液，固定约1h-2h. 也可在4c冰箱过夜。
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