扬州动物实验-南京英瀚斯生物科技-动物模型实验

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    2022-8-20

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小鼠膀胱ai原位瘤动物模型建立方法


膀胱灌注法通常采用对数生长期的mb49小鼠膀胱ai细胞株作为实验材料,6-12周龄的雌性c57/bl6小鼠作为实验动物。- -般膀胱内灌注数量为:10^4-5*10^5个,10^4-10^5个, .5x10^6-4x10^6个。实验中常通过导管对经过膜处理后膀胱灌入细胞悬液--定时间后使细胞粘附于膀胱壁上,建立起小鼠原位膀胱ai模型。该方法简便有效,成瘤率相对较高。但是在膀胱粘膜完整的情况下,发癌率- -般只有10%。为提高其移植成功率,研究者通常采用膀胱粘膜损伤技术进行膀胱灌注。常用的膀胱损伤技术有电灼法,酸性溶液和胰蛋白酶灌注法(17-19)。该方法成瘤率高,具有很强的实用性,但是膀胱ai模型插管要求高,肿liu细胞容易外渗,并且膜损伤处理过后易发生膀胱内发炎现象。





阑尾炎动物模型

方法  成年大鼠,后固定,无菌条件下开腹,将阑尾及末端回肠和与阑尾系膜相连的肠段(下称临近肠段)移出腹腔并置壁上。剪开阑尾尖部的阑尾系膜,把阑尾尖部肠内容物挤至阑尾近端肠腔内,距尖部1cm处用1号丝线将阑尾管攀结扎。把结扎了的阑尾尖部摆放在回肠根部和临近肠段之间。用小圆针细丝线(000号)把回肠根部和临近肠段相应位置缝合一针(仅穿透浆肌层),后将结扎阑尾包埋于其下。再顺续沿末端回肠由远端至近端与临近肠段相应位置紧密缝合1~2针,将阑尾全部包埋在缝合的肠段之下。将外置的全部肠段送入腹腔,两层缝合关腹,无菌纱布包扎伤口,送回笼中饲养观察。或成年家兔,后固定于手术台架上,备皮消毒铺巾后,实验动物模型公司,无菌条件下腹正中切口开腹6cm,寻及盲肠提出阑尾,于阑尾根部以4号丝线紧贴阑尾壁穿过系膜结扎阑尾,随后将阑尾纳回腹腔,逐层关腹。术后,在规定的时间点测定动物体温,行坏死阑尾炎腔内容物---培养,包囊或坏死阑尾大小的检测,以及肉眼病理观察和组织形态学改变的镜检。

特点  大鼠术后15d,阑尾呈脓性坏死,外裹一层纤维性包囊,囊内含有大量的---,模型成功率高。兔术后6~12h,阑尾充血、增粗、水肿;12~24h时,阑尾肿胀、增粗更为明显,外被脓苔与周围肠管粘连,部分阑尾壁可见斑点状出血灶,腹腔内有脓性渗液出现。与阑尾脓苔粘连的周围肠管亦呈明显的水肿、充血,甚或有阑尾系膜形成。腹腔渗液---培养有大肠生长。术后24h,兔体温可升至40℃左右。在整个造模过程中,扬州动物实验,模型动物神态萎靡,不食不饮,动物模型实验,腹部胀满,2~4d内陆续。





睡眠剥夺模型

实验用金属箱直径35 cm, 每箱装1只大鼠。remsd 各组分别置于直径为6.5 cm的小站台上,对照组大鼠置于直径15 cm的大站台上,周围是水环境,水深3 cm,平台在水面以上1 cm,于平台以上14 cm 处放笼罩,上面放水和食物。水温和室温保持在25 c,每日换水并打扫实验箱。remsd 组大鼠在小台上屈曲而立,在快动眼睡眠(rapid eye movement sleep, rems) 时,由于伴随全身肌肉松弛和节律性垂头,动物实验外包,大鼠落入水中而惊醒,再爬上站台。用此方法自18:00开始连续剥夺大鼠的rems至相应实验时间点。

 旷场实验( open field test, oft )

实验装置为高60 cm、 底面边长100 cm、内壁涂黑的无盖方箱,底面平均分为25个小方格,正上方2 m处架一---机,镜头对准箱底,实验在安静环境下进行,大鼠置于方箱底面中心,同时进行---和计时,3 min 后停止---,更换动物后,继续进行实验。2次实验之间清洗箱壁及底面,以免上次动物余留的信息影响下次实验结果。计分方法:通过放像设备,观察大鼠3 min内越过的格子数为水平得分,后肢站立次数为垂直得分,两者之和为oft总得分。remsd实验前后均进行旷场实验。




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