绵阳细胞-流式细胞检测-英瀚斯(商家)

成纤维细胞分离方法

1.处死孕鼠，全身置于75%酒精里浸泡，然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开，用另外- -组剪刀、镊子剪开腹部肌层，露出，后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有d-pbs的玻璃平皿中，冲洗去血。

2.用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除，然后夹掉头和内脏，将其余胚胎转移到一个装有30 ml d-pbs的50 ml离心管中，流式细胞检测，轻轻颠倒两次，倒掉d-pbs，细胞融合实验报告，再重复此步骤一次，注意要留少许d-pbs，然后将胚胎转移到另- -装有d-pbs的平皿中，并用手术刀片将其细细切碎。

3. 用200 μ的移液反复、快速地吹打平皿中的液体，转移至15 ml离心管中，于4c 1500 rpm离心5分钟，倒掉上清，绵阳细胞，以10 ml胰酶重悬沉淀，放在37c水浴中---30分钟，且每隔五分钟轻轻晃动，使之充分---。

4.将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml mef生长培养基的50 ml离心管中，用200目的尼龙网过滤后，以1500 rpm离心5分钟收集细胞，再用30 ml mef生长培养基洗涤两次。

5.细胞沉淀用15 ml mef生长培养基重悬后进行细胞计数(- -般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。

6. 3x106细胞悬浮于15 ml mef生长培养基中，接种到200 ml培养瓶中。

7. 24小时后更换新鲜的mef生长培养基。

8.细胞长满后，先用d-pbs冲洗，倒掉后加胰酶---(此步时间不宜过长，作者- -般不超过五分钟)，按1:5传代。

9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右， 将其---后，常规冻存(冻存液要现配)。

关于细胞培养的常见问题:

q: 细胞在培养过程中出现碎片如何处理？

a: 贴壁细胞在移除原培养液后，用 pbs 冲洗 2-3 遍；悬浮细胞离心移除原培养液后，加入 pbs 重悬，离心移除 pbs; 一般建议重复上述步骤 2-3 遍，用 800-1000rpm 离心 3-5 分钟。

q：细胞冻存能放在 -80℃ 保存吗？

a：长期保存的细胞应当放在液氮（-196℃）中保存，流式细胞技术，短时间（一般 1 周-2 周）可以存放在 -80℃。

q：培养瓶是用密封盖好，还是用透气盖好？

a：都可以。只是在使用密封盖培养瓶时，瓶盖旋至约 2/3，不要完全拧紧，预留约 1/3 以便细胞可以透气；有些品牌的密封盖培养瓶的瓶盖上有适合位置指示标志。

q:何谓 fbs，fcs，cs，hs?

a: fetal bovine serum(fbs)和 fetal calf serum(fcs)之间没有区别，都是指胎牛；fcs 不是正规命名，尽量不使用。calf serum（cs）则是指小牛。horse serum(hs)则是指马。