睡眠剥夺模型
实验用金属箱直径35 cm， 每箱装1只大鼠。remsd 各组分别置于直径为6.5 cm的小站台上，对照组大鼠置于直径15 cm的大站台上，周围是水环境，水深3 cm，平台在水面以上1 cm，于平台以上14 cm 处放笼罩，上面放水和食物。水温和室温保持在25 c，每日换水并打扫实验箱。remsd 组大鼠在小台上屈曲而立，在快动眼睡眠(rapid eye movement sleep， rems) 时，由于伴随全身肌肉松弛和节律性垂头，大鼠落入水中而惊醒，再爬上站台。用此方法自18:00开始连续剥夺大鼠的rems至相应实验时间点。
旷场实验( open field test， oft )
实验装置为高60 cm、 底面边长100 cm、内壁涂黑的无盖方箱，底面平均分为25个小方格，正上方2 m处架一---机，镜头对准箱底，实验在安静环境下进行，大鼠置于方箱底面中心，同时进行---和计时，3 min 后停止---，更换动物后，继续进行实验。2次实验之间清洗箱壁及底面，以免上次动物余留的信息影响下次实验结果。计分方法:通过放像设备，观察大鼠3 min内越过的格子数为水平得分，后肢站立次数为垂直得分，两者之和为oft总得分。remsd实验前后均进行旷场实验。
实验动物科学诞生于本世纪五十年代初期，现在已发展成为一门独立的、综合性的基础科学，它是融合 生物 学、动物学、兽医学和医学等科学，并引用了其它自然科学的成就发展起来的。因此这门科学是综合性的，它所涉及到的知识面很广泛，它所包括的内容---丰富，其中不仅要以 生物 学、医学、药学、兽医学、畜牧学等为对象，以遗传学、育种学、病理学、生理学、营养学、微生物学等为基础，还要引用机械工程学、环境卫生学、建筑学等科学，对实验动物和动物实验方法进行开发和研究。
实验动物大、小鼠的采血方法
1、动物实验中剪尾采血：需血量少时可用此方法。将动物固定，显露尾部，将尾尘剪去约5mm，从尾根部向尾端部，血即从断端流出。若用二棉球涂擦尾部或事先将鼠尾浸在45℃水中数分钟，使尾部血管充盈，动物实验室，可采到较多的血，但注意二可致溶血。也可用锋利刀片割破尾动脉或尾静脉，让---自行流出，采血后，消毒，---前动物实验，止血。如将动物取血量可更多些。小鼠每次采血约0.1ml，大鼠约0.4 ml。为了多次反复取血应尽量从鼠尾末端开始。
2、动物实验中摘眼球采血：此法常用于鼠类大量采血。用左手固定动物，---眼球，尽量使眼球---，动物实验外包，右手用无钩弯镊子或弯止血钳迅速摘除眼球，立即将鼠倒置，头朝下，眼眶内很快流出---。一般只适用于一次采血。大部动物采血后可以存活，可采另一侧眼球取血。
大鼠后眼框静脉丛取血方法
4、动物实验中颈静脉或颈动脉采血：将鼠，剪去一侧颈部外侧被毛，作颈静脉或颈动脉分离手术，用即可抽出所需血量。也可插入导管，反复采血。
5、断头采血：操作者左手拇指和食指握住鼠颈部，头朝下，用利剪在头颈间1/2处迅速剪动物头部，提起动物，---即可流入准备好的容器中。
6、---采血：将动物，海南动物实验，使其仰位固定，剪去胸前区毛，消毒皮肤，在左侧第3—4肋间选择心博强处穿刺，---借---跳动的力量进入。亦可在动物后，切开动物胸腔，直视---内抽血或剪破---，直接用、吸管等吸血。
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