细胞转染实验
目的
学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法——脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。
实验原理
上图所示是脂质体介导转染的示意图,它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。
外源基因进入细胞主要有四种方法:法、磷酸钙法和脂质体介导法和---介导法。法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;---法是利用包装了外源基因的---细胞的方法使得其进入细胞。但是由于法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;---法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。
利用脂质体转染法重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有---的作用。
细胞实验介绍——慢---建立稳转细胞系
慢---包装:公司使用3质粒慢---包装系统,慢---系统使用plko.1-egfp、pspax2、pmd2.g,过表达慢---系统使用plvx-acgfp、pspax2、pmd2.g三质粒系统,将质粒混匀后使用磷酸钙转染方法转染至hek293t细胞中,培养48h后,收集上清。使用genecopo公司慢---颗粒纯化试剂盒将慢---纯化。纯化后留取部分检测---滴度,细胞实验外包选,其余---冻存于-80℃冰箱中。
滴度检测:将---颗粒使用梯度稀释,分别293t细胞,72h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光表达情况。根据细胞荧光量计算---滴度。
细胞:在---前---对细胞进行计数,接种约10000个细胞于12孔板中,细胞实验外包公司,培养过夜后使用无培养基稀释---,加入12孔板中对细胞进行,---数量根据细胞的moi加入(若无moi,需做---梯度:1,5,10,50,宝鸡细胞实验,100 5个梯度对细胞),6h后去除含---溶液,加入完全培养基细胞培养,培养48h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光强度。同时加入puromycin对细胞筛选,筛选约2周时间。细胞筛选好后,使用定量pcr和western blot检测目的基因的稳定表达情况。
实验流程:慢---质粒构建-hek293t细胞培养-质粒转染293t细胞----收集----纯化----滴度检测-细胞-稳转细胞筛选-稳转细胞鉴定
结果示例:
图 a ---滴度检测;b 目的细胞---效果图
3d细胞培养
3d多细胞肿liu球是在体外应用组织培养方法使肿liu细胞以多细胞集聚体的形式生长成为具有三维结构的球体。与传统的2d贴壁细胞培养模型相比,3d多细胞肿liu球可以通过模拟三维细胞网络、细胞与基质、细胞与细胞之间的相互作用,从而贴近肿liu组织中相应的病理生理特征。因此, 3d多细胞肿liu球培养模型已经逐渐应用于gan细胞培养和分化、ai症研究、yao物和毒性筛选及组织工程等特定应用中。虽然3d多细胞肿liu球模型具有更---的实体肿liu生理相关性,但是与2d贴壁细胞培养模型相比,获得大量相对统一的3d多细胞肿liu球模型需要-系列的培养过程和表征手段。
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