成纤维细胞分离方法
1.处死孕鼠，全身置于75%酒精里浸泡，细胞，然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开，用另外- -组剪刀、镊子剪开腹部肌层，细胞融合实验报告，露出，后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有d-pbs的玻璃平皿中，冲洗去血。
2.用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除，然后夹掉头和内脏，将其余胚胎转移到一个装有30 ml d-pbs的50 ml离心管中，轻轻颠倒两次，倒掉d-pbs，感受态细胞，再重复此步骤一次，注意要留少许d-pbs，然后将胚胎转移到另- -装有d-pbs的平皿中，并用手术刀片将其细细切碎。
3. 用200 μ的移液反复、快速地吹打平皿中的液体，转移至15 ml离心管中，于4c 1500 rpm离心5分钟，倒掉上清，以10 ml胰酶重悬沉淀，放在37c水浴中---30分钟，且每隔五分钟轻轻晃动，使之充分---。
4.将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml mef生长培养基的50 ml离心管中，用200目的尼龙网过滤后，以1500 rpm离心5分钟收集细胞，再用30 ml mef生长培养基洗涤两次。
5.细胞沉淀用15 ml mef生长培养基重悬后进行细胞计数(- -般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。
6. 3x106细胞悬浮于15 ml mef生长培养基中，接种到200 ml培养瓶中。
7. 24小时后更换新鲜的mef生长培养基。
8.细胞长满后，先用d-pbs冲洗，倒掉后加胰酶---(此步时间不宜过长，作者- -般不超过五分钟)，原代细胞，按1:5传代。
9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右， 将其---后，常规冻存(冻存液要现配)。
二、脂质体转染操作步骤
1、操作步骤 [方法一]：
(1) 细胞培养：取 6 孔培养板 (或用 35 mm 培养皿)，向每孔中加入 2 ml 含 1～2×105 个细胞培养液，37℃ co2 培养至 40%～60% 汇合时 (汇合过分，转染后不利筛选细胞)。
(2) 转染液制备：在聚---乙稀管中制备以下两液 (为转染每一个孔细胞所用的量)a 液：用不含培养基稀释 1-10 μg dna，终量 100μl，b 液：用不含培养基稀释 2-50 μglr，终量 100μl，轻轻混合 a、b 液，室温中置 10-15 分钟，稍后会出现微浊现象，但并不妨碍转染 (如出现沉淀可能因 lr 或 dna 浓度过高所致，应酌情减量)。
(3) 转染准备：用 2 ml 不含培养液漂洗两次，再加入 1 ml 不含培养液。
(4) 转染：把 a/b 复合物缓缓加入培养液中，摇匀，37℃ 温箱置 6～24 小时，吸除无转染液，换入正常培养液继续培养。
(5) 其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。
注意：转染时切勿加，对转染效率有很大影响。
自噬(autophagy)是细胞受到---后吞噬自身的细胞质或细胞器，终将吞食物在溶酶体内降解的过程，自噬体(autophagosome)为双层膜包被的圆形或椭圆形结构，内含细胞质、长寿蛋白质和异常蛋白---物，损伤或多余细胞器如线粒体、粗面内质网和微体、
---和---等。单丹---尸胺(dansylcadaverine，mdc是一种荧光色素，是嗜酸性染色剂，通常被于检测自噬体形成的特---标记染色剂，其检测激发滤光片波长355nm ，阻断滤光片波长512nm。leagene mdc染色液适用于培养细胞的自噬染色，可与eb合用双染。
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