细胞培养中常见的污染及解决方法
原生动物污染
原生动物污染后,细胞培养基变得轻微浑浊。在显微镜下,大量的小点来回移动。虽然此时细胞仍能生长,但繁殖速度减慢,细胞生长状态不好,边缘不清,变得不透明。原生动物与细胞形成共生关系。同时,原生动物与细胞竞争营养。这种共生现象非常普遍,但以细胞为主,因为原生动物的数量相对较少,因而对细胞的正常生长没有影响,只有当它们达到一定数量时,才终---成为循环。
解决方法:原生动物污染的原因有很多,如液体消毒问题、操作问题、环境问题等,如果细胞足够,果断丢弃被污染的细胞和复苏细胞。如果要保留,需要购买使用相关的灭菌试剂。
细胞实验介绍——慢---建立稳转细胞系
慢---包装:公司使用3质粒慢---包装系统,流式细胞实验,慢---系统使用plko.1-egfp、pspax2、pmd2.g,过表达慢---系统使用plvx-acgfp、pspax2、pmd2.g三质粒系统,将质粒混匀后使用磷酸钙转染方法转染至hek293t细胞中,培养48h后,细胞生物学实验,收集上清。使用genecopo公司慢---颗粒纯化试剂盒将慢---纯化。纯化后留取部分检测---滴度,其余---冻存于-80℃冰箱中。
滴度检测:将---颗粒使用梯度稀释,分别293t细胞,细胞实验外包,72h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光表达情况。根据细胞荧光量计算---滴度。
细胞:在---前---对细胞进行计数,接种约10000个细胞于12孔板中,培养过夜后使用无培养基稀释---,加入12孔板中对细胞进行,---数量根据细胞的moi加入(若无moi,需做---梯度:1,5,10,50,100 5个梯度对细胞),6h后去除含---溶液,广西细胞,加入完全培养基细胞培养,培养48h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光强度。同时加入puromycin对细胞筛选,筛选约2周时间。细胞筛选好后,使用定量pcr和western blot检测目的基因的稳定表达情况。
实验流程:慢---质粒构建-hek293t细胞培养-质粒转染293t细胞----收集----纯化----滴度检测-细胞-稳转细胞筛选-稳转细胞鉴定
结果示例:
图 a ---滴度检测;b 目的细胞---效果图
脂质体瞬时转染
1、细胞h9c2 (hela) 6孔板hela1x10°/孔。
2、转染前换上没有抗sheng素的dmem+胎清(10%)。
3、将质粒dna (约2-4ul) 2ul 加入dorf管中+dmem至50u1。
4、脂质体5ul补培养基至50ul混匀静止5分钟(质粒与脂质体比例为1:2或1.5:2.5)。
5、将含有脂质体的培养基与含质粒的混合总体积100ul室温放置30分钟。
6、吸取混合物均匀加入每一个孔中。
7、将6孔板放入培养箱中继续培养6小时后吸出培养基换上新配置的培养基dmem6ml+胎清600u1+三抗300u1。
8、培养24小时。
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