透射电镜观察:可见凋亡细胞表面微绒毛消失,核染色质固缩、边.集,常呈新月形,核膜皱褶,胞质紧实,细胞器集中,胞膜起泡或出“芽”及凋亡小体和调亡小体被临近巨噬细胞吞噬现象。
结果评判:调亡细胞体积变小,细胞质浓缩。调亡i期( pro-apoptosis nuclei)的细胞核内染色---度盘绕,出现许多称为气穴现象( cavitati)的空泡结构; iia 期细胞核的染色---度凝聚、边缘化;细胞凋亡的晚期,细胞核裂解为碎块,产生调亡小体。
软琼脂培养克l隆形成试验基本步骤:
(1)取对数生长期细胞,用0.25%胰蛋白酶---并轻轻吹打,使之成为单细胞,作活l细胞计数,细胞实验外包选,用含20%胎牛血l清的dmem培养液调整细胞密度至1x106细胞/l。然后根据实验要求作梯度倍数稀释。
(2)用蒸馏水分别制备出1.2%和0.7%两个浓度的低溶点琼脂糖液,高压灭菌后,维持在40日中不会凝固。
(3)按1:1比例使1.2%的琼脂糖和2xdmem培养基(含有2x和20%的小牛血l清)混合后,取3ml混合液注入直径6cm平皿中(10cm平皿加7~ 10ml),冷却凝固,可作底层琼脂置co2温箱中备用。
(4)按1:1比例让0.7%的琼脂糖和2xdmem培养基在无菌试管中相混以后,再向管中加入0.2ml的细胞悬液,甘肃细胞实验,充分混匀,注入铺有1.2%琼脂糖底层平皿中,逐形成双琼脂层。待上层琼脂凝固后,置入37回5%co2温箱中培养10~14天。
(5)把平皿放置在倒置显微镜下,观察细胞数。计算形成率。软琼脂培养法常用检测肿l瘤细胞和转化细胞系。试验中琼脂与细胞相混时,琼脂温度不宜超过40日。接种细胞的密度每平方厘米不超过35个,一般6cm的平皿接种1000个细胞。正常细胞在悬浮状态下不能增殖,不适用于软琼脂克l隆形成试验。
软琼脂集落形成率实验(软琼脂克l隆)
将1.2%低熔点琼脂糖与2x细胞培养基以1:1的体积比混合制备0.6%的底层琼脂,6孔板中每个孔1.4ml温室凝固,取对数期细胞,胰酶---后吹散成单个细胞悬液,计数,并调细胞浓度为10000个/ml,将0.6%低熔点琼脂糖与2x细胞培养基以1:1的体积比混合,制备0.3%的上层琼脂,每孔加1ml 上层琼脂和100ul单细胞悬液(约1000ell/wel), 混匀,室温凝固。置于37目,5%co2的细胞培养箱中培养2-3周,计数含50个细胞以上得克l隆,计算细胞集落形成率,spotll 采集图像。
二、脂质体转染操作步骤
1、操作步骤 [方法一]:
(1) 细胞培养:取 6 孔培养板 (或用 35 mm 培养皿),向每孔中加入 2 ml 含 1~2×105 个细胞培养液,37℃ co2 培养至 40%~60% 汇合时 (汇合过分,转染后不利筛选细胞)。
(2) 转染液制备:在聚---乙稀管中制备以下两液 (为转染每一个孔细胞所用的量)a 液:用不含培养基稀释 1-10 μg dna,终量 100μl,b 液:用不含培养基稀释 2-50 μglr,细胞实验外包,终量 100μl,轻轻混合 a、b 液,室温中置 10-15 分钟,稍后会出现微浊现象,但并不妨碍转染 (如出现沉淀可能因 lr 或 dna 浓度过高所致,细胞实验外包,应酌情减量)。
(3) 转染准备:用 2 ml 不含培养液漂洗两次,再加入 1 ml 不含培养液。
(4) 转染:把 a/b 复合物缓缓加入培养液中,摇匀,37℃ 温箱置 6~24 小时,吸除无转染液,换入正常培养液继续培养。
(5) 其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。
注意:转染时切勿加,对转染效率有很大影响。
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