细胞毒性实验-巴中细胞-南京英瀚斯生物科技

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    2024-2-25

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关于细胞冻存的注意事项:

1.  为保持细胞大存活率,一般都采用慢冻存融的方法。

2.  冻存物距液氮面越近温度越低。标准的低冻速度为-1℃~12℃/ 分钟,当温度下降达-25℃时,下降速度可增至-5~-10℃/ 分钟,到-100℃时则可迅速冻入液氮中。因此要适当掌握冻存物下降入液氮中的速度,过快能影响细胞内水分透出,太慢则促冰晶形成。

3.  初次冻存者在下降冻存时,宜先用细木棒伸入罐中探测液面位置,然后需用温度计与冻存物并行的办法,以观测下降冻存物的速度、冻存物与液氮液面距离和温度三者关系,当已掌握以上各参数和冻存技术熟练后,仅按下降时间和下降距离便可获理想冻存效果。





大鼠脂肪的分离

 将手术切取的大鼠脂肪组织尽量剪碎后移至离心管,其余步骤与人脂肪的分离一致。

 经手术切除获得的大鼠皮下脂肪组织---后原代培养24 h,且肉眼观察会发现培养瓶底部贴附着一层网状薄膜,轻轻摇晃培养瓶可使这层网状薄膜从瓶壁上脱落,镜下观 察发现大部分细胞都附着于这层膜上,通过术获取的人脂肪组织---后则无此现象。增加胶原酶的量和---时间也无法避免,取材时的或脂肪间结缔组织未被完全---,巴中细胞,穿过细胞筛进入了培养瓶并沉淀于瓶底部形成的。胶原蛋白酶虽然可以特---水解胶原蛋白的三维螺旋结构,但不会损伤其他蛋白质。处理方法是37 ℃下用胰蛋白酶 ---5 min。然后利用40 μm的细胞筛过滤后传代。 根据作者的经验,每毫升手术切除的大鼠脂肪可分离基质血管成分细胞约1.81×106个。原代培养2.24×10^7个大鼠基质血管成分细胞,40 h后传代时约剩余 6.2×10^6个细胞,细胞剩余率27%。




二、脂质体转染操作步骤

1、操作步骤 [方法一]:

(1) 细胞培养:取 6 孔培养板 (或用 35 mm 培养皿),向每孔中加入 2 ml 含 1~2×105 个细胞培养液,37℃ co2 培养至 40%~60% 汇合时 (汇合过分,转染后不利筛选细胞)。

(2) 转染液制备:在聚---乙稀管中制备以下两液 (为转染每一个孔细胞所用的量)a 液:用不含培养基稀释 1-10 μg dna,细胞培养,终量 100μl,b 液:用不含培养基稀释 2-50 μglr,终量 100μl,轻轻混合 a、b 液,室温中置 10-15 分钟,稍后会出现微浊现象,但并不妨碍转染 (如出现沉淀可能因 lr 或 dna 浓度过高所致,应酌情减量)。

(3) 转染准备:用 2 ml 不含培养液漂洗两次,再加入 1 ml 不含培养液。

(4) 转染:把 a/b 复合物缓缓加入培养液中,细胞毒性实验,摇匀,37℃ 温箱置 6~24 小时,---,吸除无转染液,换入正常培养液继续培养。

(5) 其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。

注意:转染时切勿加,对转染效率有很大影响。



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