透射电镜自噬小体检测
胰酶---,连云港细胞实验,收集作用后的细胞,离心,先将细胞块固定在2.5%成二醛和0.1%的pbs溶液中保存在4c中过夜。
再用---梯度脱水,接下来用环氧树脂浸透并切成薄片。随后超薄切片用铜网固定,后用重金属---双氧---和柠檬酸铅染色。通过tem分析凋亡细胞内超微结构变化,拍照保存。
贴壁细胞:先倒出培养液,采用胰蛋白酶---或者用细胞刮(会产生碎屑)刮下:带培养液进行离心,100-1500/mim 5 10min。离心完毕倒出培养液。管底的细胞团不要打散, 沿管壁倒入适量(一般为材料体积的5-10倍)的2.5-3.5%成醒固定液,固定约1h-2h. 也可在4c冰箱过夜。
透射电镜观察自噬小体方法
利用光学显微镜,借助相应的染色方法,可以观察细胞凋亡时会出现的一系列形态特征。常用的染色法包括台盼蓝、橙 / 化乙啶(ao/eb)、giemsa 和 he 法等。在光学显微镜下可以观察到核固缩、质浓缩和凋亡小体等典型的凋亡现象。
电镜形态学观察法是一种比较---、---的方法,被认为是确定细胞凋亡的金标准。电镜下凋亡细胞表现为染色质凝集、核浓缩、核裂解、胞浆收缩和胞膜具有发泡现象及凋亡小体出现等。
成纤维细胞分离方法
1.处死孕鼠,细胞实验外包选,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开,用另外- -组剪刀、镊子剪开腹部肌层,露出,后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有d-pbs的玻璃平皿中,冲洗去血。
2.用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除,细胞实验外包公司,然后夹掉头和内脏,将其余胚胎转移到一个装有30 ml d-pbs的50 ml离心管中,轻轻颠倒两次,倒掉d-pbs,再重复此步骤一次,注意要留少许d-pbs,然后将胚胎转移到另- -装有d-pbs的平皿中,并用手术刀片将其细细切碎。
3. 用200 μ的移液反复、快速地吹打平皿中的液体,转移至15 ml离心管中,于4c 1500 rpm离心5分钟,倒掉上清,以10 ml胰酶重悬沉淀,放在37c水浴中---30分钟,且每隔五分钟轻轻晃动,使之充分---。
4.将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml mef生长培养基的50 ml离心管中,用200目的尼龙网过滤后,以1500 rpm离心5分钟收集细胞,再用30 ml mef生长培养基洗涤两次。
5.细胞沉淀用15 ml mef生长培养基重悬后进行细胞计数(- -般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。
6. 3x106细胞悬浮于15 ml mef生长培养基中,接种到200 ml培养瓶中。
7. 24小时后更换新鲜的mef生长培养基。
8.细胞长满后,细胞实验外包,先用d-pbs冲洗,倒掉后加胰酶---(此步时间不宜过长,作者- -般不超过五分钟),按1:5传代。
9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右, 将其---后,常规冻存(冻存液要现配)。
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