




二、脂质体转染操作步骤
1、操作步骤 [方法一]:
(1) 细胞培养:取 6 孔培养板 (或用 35 mm 培养皿),向每孔中加入 2 ml 含 1~2×105 个细胞培养液,37℃ co2 培养至 40%~60% 汇合时 (汇合过分,转染后不利筛选细胞)。
(2) 转染液制备:在聚---乙稀管中制备以下两液 (为转染每一个孔细胞所用的量)a 液:用不含培养基稀释 1-10 μg dna,终量 100μl,b 液:用不含培养基稀释 2-50 μglr,终量 100μl,轻轻混合 a、b 液,室温中置 10-15 分钟,稍后会出现微浊现象,但并不妨碍转染 (如出现沉淀可能因 lr 或 dna 浓度过高所致,应酌情减量)。
(3) 转染准备:用 2 ml 不含培养液漂洗两次,再加入 1 ml 不含培养液。
(4) 转染:把 a/b 复合物缓缓加入培养液中,摇匀,细胞实验外包公司,37℃ 温箱置 6~24 小时,吸除无转染液,换入正常培养液继续培养。
(5) 其余处理如观察、筛选、检测等与其它转染法相同。
注意:转染时切勿加,对转染效率有很大影响。
大鼠gu髓间充质gan细胞的分离
操作方法
(1 )取sd大鼠( 2周龄),颈椎脱臼法处死后立即用75%---浸泡,移入超净工作台内,用大头针固定大鼠四肢于工作台面的泡沫板上。
(2)碘酒擦拭四肢,再用酒精棉球擦拭,细胞实验外包,无菌条件下用灭菌消毒后的镊子和剪刀分离出大鼠股骨和胫骨,剔除骨头表面肌肉, pbs溶液冲洗两遍。
(3 )从中间剪断股骨和胫骨,用2ml无菌注she器吸取dmem/f 12溶液冲出gu髓细胞多次,再用针头吹打,吸管吸入离心管内,1000r/min离心5min,弃上清,用pbs重悬细胞。
(4 )缓慢将细胞悬液加入预先装有5ml淋巴细胞分离液的15ml离心管内,保持细胞悬液在淋巴细胞分离液上层,注意不要搅动液面,保持二者分层界面。
(5 ) 2000rpm离心15-25min,离心后溶液分4层,吸取中间骨sui基质细胞层(白色浑浊状), pbs洗三次。
(6)用含15%胎牛xue清及青链mei素的dmem/f 12以106/ml的细胞浓度接种于25cm2培养瓶中, 置37°c、5%co2恒温培养箱中培养。
( 7 ) 24小时后弃去培养液(看细胞贴壁情况),pbs冲洗2-3次去除末贴壁细胞,加入培养液继续培养。以后每3d半量换液1次,-般10d细胞生长融合。
(8 )经0.25%胰酶---,1 : 2传代,其后一般3-5d传代1次,选取生长---的第三代细胞进行后续实验。
细胞冻存有哪些注意事项?
细胞培养的传代及日常维持过程中,在培养器具、培养液及各种准备工作方面都需大量的耗费,而且细胞一旦离开开始原代培养,它的各种生物特性都将逐渐发生变化并随着传代次数的增加和体外环境条件的变化而不断有新的变化。因此及时进行细胞冻存十分---。细胞冷冻储存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;细胞储存在液氮中,温度达-196℃,理论上储存时间是的。
细胞冻存的步骤:
配制含 10%dmso 或甘油、10~20% 小牛的冻存培养液;
取对数生长期的细胞,去除旧培养液,用 pbs 清洗。
去除 pbs,加入适量胰蛋白酶 (覆盖培养皿表面) 把单层生长的细胞---下来;
离心 1000rpm,5min;
去除胰蛋白酶,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的终密度为 5×106/ml~1×107/ml;
将细胞分装入冻存管中,每管 1~1.5 ml;
在冻存管上标明细胞的名称,河南细胞实验,冻存时间及操作者;
冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/ min;当温度达-25℃以下时,细胞实验外包,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱 2h ,然后放入-70℃冰箱中过夜,取出冻存管,移入液氮容器内。

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